Practica 8,9 Aglutinacion
Empezamos con nuestro equipo de bioseguridad y nos entregaron los materiales necesarios para la extracción de sangre.
Se hizo la técnica de veno punción para utilizar 2.5 ml en volumen y vaciarlo en un tubo de ensaye de tapa roja.
Le dimos el tiempo de coagulación y se metió a la centrífuga para separar el plasma y con una pipeta Pasteur con bulbo punteamos sobre la laminilla de cristal para reacciones febriles y en cada círculo de la laminilla con su gota de de plasma se le aplicó febriclin H O A B Brucella abortus y Proteus.
En la parte en la que mirábamos al microscopio se pudo observar como arenilla en la laminilla.
Para hacer la prueba de aglutinación en sangre se utiliza la que está fresca, usamos la sangre que vaciamos en el tubo con tapa morada.
Con la pipeta Pasteur se puntea una gota de sangre en 3 orificios de la placa excavada y se agrego a cada una, una gota de reactivo, se pudo observar como una gota de sangre se quebró, se agrietó las otras seguían igual.
Conclusión:
Con estas pruebas se puede determinar el tipo sanguíneo del paciente y con las reacciones febriles se puede ver determinada bacteria.
domingo, 21 de junio de 2009
Practica 6,7 Tincion de gram
Una ves puesto el campo de esterilizacion, se nos fue entregando el frotis ya antes realizado,
ahora tubimos que colocar la preparacion fijada con la solucion de cristal violeta durante 1m,
despues lo dejamos escurrir y luego lo metemos en yodo durante 1m, despues que haya pasado
el minuto lo lavamos con algo y se mete en la otra solucion durante 30 seg, una ves echo eso lo
dejamos secar y le ponemos una gota de aceite de imercion.
y por ultimo lo observamos por el microscopio.
Practica 5 Frotis
FROTIS
Con el asa bactereologica se va a desarrollar un frotis en un portaobjetos de cristal.
Se toma el asa bactereologica se pone en la flama del mechero dejandola al rojo vivo para que se esterilize, se retira del fuego se toma una pequeña gota de agua destilada, con ella misma se extrae una muestra del material bactereologico que crecio en las cajas petri.
una vez teniendo ese material en el asa de acude a ponerlo en el portaobjetos en la parte central desplazando de izquierda a derecha el material bactereologico hasta que nos quede delgada, una vez teniendola verificamos si ya esta lista para el frotis de la muestra del cultivo.
ya realizado el frotis se fija de forma directa, se toma el porta de sus partes laterales a lo largo para su transporte.
Por ultimo, se toma el porta de forma lateral para pasarlo por la flama nunca se debe dejar de forma directa en la flama.
una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tincion.
Practica 4
OBSERVACION MACROSCOPICA
En esta practica observamos lo que sembramos y observamos que cambio de color y de olor para esto esperaremos de 24 hrs para ver si crece nuestra siembra
En esta practica observamos lo que sembramos y observamos que cambio de color y de olor para esto esperaremos de 24 hrs para ver si crece nuestra siembra
Practica 3 Siembras
Practica 3 Siembras.
El alumno debe realizar una siembra en medio de cultivo de forma estriada, variada y aplicando el nombre de cada una de las que se dieron.
Materiales:
-5 o 7 cajas petri de medio de cultivo.
-Asa bacteriologica
-Vaso de precipitado con 25ml. de agua destilada.
-2 mecheros de bunsen
-Papel para mesa de laboratorio
-Tape
-Algodon secoAlgodones con alcohol
-Tubo conico de plastico
Muestras para siembras:
-Saliva
-Muestra interdental
-Orina
-Agua preparada
-Verduras
-Muestra de sangre
Tecnica de extraccion sanguinea:
Materiales:
-Jeringa 5ml.
-Torundas de algodon alcoholosadas
-Torniquete
despues de aber entregarnos los materiales realizamos la siembra necesaria que nos toco en este caso sembranos orina el tipo de siembra que realizamos es estirada despues de aver sembrado la sellamos y pusimos nuestros datos y lo entregamos para llevarlo a la encubadora.
El alumno debe realizar una siembra en medio de cultivo de forma estriada, variada y aplicando el nombre de cada una de las que se dieron.
Materiales:
-5 o 7 cajas petri de medio de cultivo.
-Asa bacteriologica
-Vaso de precipitado con 25ml. de agua destilada.
-2 mecheros de bunsen
-Papel para mesa de laboratorio
-Tape
-Algodon secoAlgodones con alcohol
-Tubo conico de plastico
Muestras para siembras:
-Saliva
-Muestra interdental
-Orina
-Agua preparada
-Verduras
-Muestra de sangre
Tecnica de extraccion sanguinea:
Materiales:
-Jeringa 5ml.
-Torundas de algodon alcoholosadas
-Torniquete
despues de aber entregarnos los materiales realizamos la siembra necesaria que nos toco en este caso sembranos orina el tipo de siembra que realizamos es estirada despues de aver sembrado la sellamos y pusimos nuestros datos y lo entregamos para llevarlo a la encubadora.
martes, 16 de junio de 2009
Practica 1,2 medios de cultivo
Practica 1
Medios de cultivo
Al entrar al laboratorio Químico nos colocamos nuestro equipo de bioseguridad , recogimos el bala de materiales y escribimos los materiales que utilizaremos para la practica y los materiales que ocupamos fueron los siguientes :
-Balanza gran ataría
-varilla de cristal
-matraz ele Mayer
-vaso de precipitado
-2 mecheros de bunsen
-embudo de Buren
-probeta graduada
-vidrio de reloj
-medio de cultivo
-7 cajas potril
-espátula
-agua destilada
-gas LP
Después de obtener dichos materiales nos pusimos a trabajar en la regla de 3 para obtener la cantidad necesaria que se ocupa en el medio de cultivo .
Después pesamos cierta cantidad de medios de cultivo para obtener la cantidad necesaria para cada caja potril la cual es 6.65 de medio de cultivo después la mezclamos con agua destilada en un baso de precipitado después de haberlo mezclado lo batimos hasta que no quedaran grumos dejamos reposar por 10 minutos y luego encendimos los mechero hasta que llegara al punto de ebullición la mezcla que hicimos se dejo reposar 5 minutos después de haberlo dejado reposar lo taconeamos con torundas de algodón y les pusimos una cinta con nuestros datos después de Haver puesto los datos se coloco en el autoclave y esperamos 15 minutos después de haberlo echo se dejo reposar a temperatura media hasta que desapareciera el vapor.
lunes, 15 de junio de 2009
Tipos de siembra
Cultivo en medio líquido Habitualmente se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.Cultivo en medio sólido Puede ser en tubos o placas.
a) Tubos con agar inclinado.
Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar.
b) Tubos sin inclinar.
Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura.
c) Siembra en placas.
Puede ser en superficie o incorporada.
En superficie:
1) Se colocan 0.1 mL de la dilución de la muestra con pipeta estéril en el centro de la placa, y se distribuye con un rastrillo estéril.
2) Se siembra con un ansa para aislar, como se explica más adelante.
3) Se siembra con un hisopo.IncorporadaSe coloca 1 mL de la muestra en una placa estéril vacía, en el centro de la misma. Sobre ella se agregan 20 mL de medio de cultivo fundido y termostatizado a 45ºC; luego se agita la placa, moviéndola 4 veces en sentido horario, 4 en sentido antihorario, una vez de arriba a abajo, una vez hacia los costados y una vez en sentido antihorario.Las placas se incuban invertidas, ya que la alta concentración de agua en el medio puede provocar condensación durante la incubación y si cae sobre la superficie del agar, se extiende dando un crecimiento confluente.En medio sólido cada célula viable dará origen a una colonia y por lo tanto la siembra en placas se puede utilizar, no solo para cultivar microorganismos, sino además para contar y aislar.En general cuando se quieren tener colonias aisladas a partir de un material determinado, es necesario diluir la muestra en tubos con suero fisiológico estéril.
a) Tubos con agar inclinado.
Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar.
b) Tubos sin inclinar.
Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura.
c) Siembra en placas.
Puede ser en superficie o incorporada.
En superficie:
1) Se colocan 0.1 mL de la dilución de la muestra con pipeta estéril en el centro de la placa, y se distribuye con un rastrillo estéril.
2) Se siembra con un ansa para aislar, como se explica más adelante.
3) Se siembra con un hisopo.IncorporadaSe coloca 1 mL de la muestra en una placa estéril vacía, en el centro de la misma. Sobre ella se agregan 20 mL de medio de cultivo fundido y termostatizado a 45ºC; luego se agita la placa, moviéndola 4 veces en sentido horario, 4 en sentido antihorario, una vez de arriba a abajo, una vez hacia los costados y una vez en sentido antihorario.Las placas se incuban invertidas, ya que la alta concentración de agua en el medio puede provocar condensación durante la incubación y si cae sobre la superficie del agar, se extiende dando un crecimiento confluente.En medio sólido cada célula viable dará origen a una colonia y por lo tanto la siembra en placas se puede utilizar, no solo para cultivar microorganismos, sino además para contar y aislar.En general cuando se quieren tener colonias aisladas a partir de un material determinado, es necesario diluir la muestra en tubos con suero fisiológico estéril.
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